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臺灣地區(qū)預告訂定《食品中海洋生物毒素之檢驗方法-神經(jīng)性貝類毒素之檢驗》

放大字體  縮小字體 時間:2019-05-06 15:48 來源:食品伙伴網(wǎng) 作者: 可心   
核心提示:2019年5月6日,臺灣衛(wèi)福部食藥署發(fā)布衛(wèi)授食字第1081900523號通知,預告訂定《食品中海洋生物毒素之檢驗方法-神經(jīng)性貝類毒素之檢驗》草案。
  食品伙伴網(wǎng)訊  2019年5月6日,臺灣衛(wèi)福部食藥署發(fā)布衛(wèi)授食字第1081900523號通知,預告訂定《食品中海洋生物毒素之檢驗方法-神經(jīng)性貝類毒素之檢驗》草案。具體內(nèi)容如下附件。
 
  附件:
 
  食品中海洋生物毒素之檢驗方法-神經(jīng)性貝類毒素之檢驗(草案)

  Method of Test for Marine Biotoxins in FoodsTest of Neurotoxic Shellfish Poison
 
  1. 適用范圍:本檢驗方法適用于貝類中神經(jīng)性貝類毒素(neurotoxicshellfish poison, NSP)之檢驗。
 
  2. 檢驗方法:檢體經(jīng)萃取后,以小鼠生物試驗(mouse bioassay)之方法。
 
  2.1. 裝置:
 
  2.1.1. 均質機(Homogenizer)。
 
  2.1.2. 減壓濃縮機(Rotary evaporator)。
 
  2.1.3. 振蕩器(Shaker)。
 
  2.1.4. 離心機:可達6000 × g以上。
 
  2.2. 試藥:鹽酸、無水乙醚、Tween-60、氯化鈉及次氯酸鈉均采用試藥特級;去離子水(比電阻于25℃可達18 MΩcm以上)。
 
  2.3. 器具及材料:
 
  2.3.1. 離心瓶: 500 mL,PP材質。
 
  2.3.2. 容量瓶:100 mL及1000 mL。
 
  2.3.3. 分液漏斗:500 mL。
 
  2.3.4. 燒杯:500 mL。
 
  2.3.5. 減壓濃縮瓶:500 mL。
 
  2.3.6. 布氏漏斗。
 
  2.3.7. 金屬篩網(wǎng):孔徑2 mm。
 
  2.3.8. 刀片或小刀。
 
  2.3.9. 注射針:1 mL,針頭25 G以上。
 
  2.3.10. 計時器。
 
  2.4. 試驗動物:ICR品系雄性小鼠,體重14~20 g。
 
  2.5. 試劑之調制:
 
  2.5.1. 0.85%氯化鈉溶液:稱取氯化鈉0.85 g,以去離子水溶解使成100 mL。
 
  2.5.2. 1% Tween-60氯化鈉溶液:稱取Tween-60 1 g,以0.85%氯化鈉溶液溶解使成100 mL。
 
  2.5.3. 5%次氯酸鈉溶液:稱取次氯酸鈉50 g,以去離子水溶解使成1000 mL。
 
  2.6. 檢體前處理(注1):
 
  2.6.1. 生鮮含殼貝類檢體:
 
  用水將檢體外殼徹底洗凈,以刀片或小刀切斷閉殼肌開殼,用水沖洗內(nèi)部去除泥沙及其他外來物。將閉殼肌和連接在絞合部之組織分開,取出貝肉,勿割破肉體。開殼前不可加熱或使用麻醉劑。稱取貝肉200 g置于金屬篩網(wǎng)上,瀝水5分鐘,去除碎殼等雜物,將貝肉均質后備用。
 
  2.6.2. 冷凍檢體:
 
  檢體于室溫下退冰成半冷凍狀態(tài)。帶殼檢體按2.6.1.節(jié)清洗、開殼、沖洗取出貝肉及除去貝肉外部附著之冰片,擦干水分后于室溫下回溫。稱取貝肉200 g置于金屬篩網(wǎng)上,瀝水5分鐘,將貝肉均質后備用。
 
  2.6.3. 貝類罐頭:
 
  將檢體內(nèi)容物瀝干水分,倒入均質機均質后備用。
 
  2.6.4. 貝類干制品:
 
  稱取檢體100 g,加入足量清水,于4℃冷藏浸泡24~48小時,瀝干水分后均質備用。
 
  2.6.5. 腌漬品:
 
  檢體先以水洗,去除鹽分,瀝干水分后均質備用。
 
  注1:每種貝類檢體至少要取10個以上,且貝肉需達200 g以上。冷凍檢體送驗時須為冷凍狀態(tài)或運送溫度應保持0~10℃。
 
  2.7. 檢液之調制:
 
  取2.6.節(jié)均質后檢體100 g,置于燒杯中,加入氯化鈉5 g及鹽酸1mL,加熱攪拌至沸騰,轉小火煮5分鐘,冷卻至室溫,移入離心管瓶,以無水乙醚50 mL清洗燒杯,洗液并入離心瓶中,再加入無水乙醚100 mL,蓋上蓋子充分振蕩,以6000 × g離心15分鐘。將上層液移至分液漏斗中,殘渣再以無水乙醚250 mL分三次重復萃取,將無水乙醚層并入分液漏斗中,輕輕振搖,避免生成乳濁液,靜置分層,去除下層水層及貝肉碎片,將上層無水乙醚層移入減壓濃縮瓶中,于35℃減壓濃縮去除無水乙醚,殘留物以1% Tween-60氯化鈉溶液清洗至最終體積為10mL,混合均勻,供作檢液。
 
  2.8. 小鼠生物試驗操作:
 
  取檢液各1 mL,分別注入3只小鼠腹腔(注2),觀察是否使試驗動物產(chǎn)生特異性臨床征狀,如呼吸困難、步履蹣跚、翻滾、四肢抽搐等,并以計時器記錄致死時間。自注射起連續(xù)觀察930分鐘,若小鼠的中間致死時間(第2只小鼠死亡時間)在2小時以內(nèi),則用1% Tween-60氯化鈉溶液稀釋檢液后重新注射另外3只小鼠,直到小鼠的中間致死時間在2~6小時內(nèi)。另取1%Tween-60氯化鈉溶液1 mL作空白對照組,同檢液組操作。
 
  注2:注射時若有檢液溢出,須將該小鼠丟棄,并重新注射一只。
 
  2.9. 檢體毒素劑量之計算:
 
  由檢液組或稀釋液組中各小鼠死亡時間參照致死時間-小鼠單位換算表(附表一),查出對應之小鼠單位,與小鼠體重-小鼠單位校正表(附表二)之校正系數(shù)相乘,求得各小鼠CMU(i),取各小鼠CMU(i)之中位數(shù)(CMU(g)(注3),并依下列計算式求出檢體毒素劑量(MU/kg):
 
  無標題
 
  CMU(g):檢液組或稀釋液組中各小鼠CMU(i)的中位數(shù)(MU/mL)
 
  F:檢液稀釋倍數(shù)
 
  W:檢液1 mL相當之檢體重量(g/mL)
 
  注3:若檢液組或稀釋液組僅2只小鼠于930分鐘內(nèi)死亡,計算2只小鼠CMU(i),取較小CMU(i)為CMU(g),計算檢體毒素劑量;若檢液組僅1只小鼠于930分鐘內(nèi)死亡,或所有小鼠均不死亡,則檢體毒素劑量以< 100 MU/kg表示。
 
  附注:手套、玻璃制品等用過器材,及廢棄萃取液應浸泡5%次氯酸
 
  鈉溶液1小時以上,使毒素分解,再作清洗或丟棄。
 
  參考文獻:
 
  1. American Public Health Association. 1970. Recommended procedures for the examination of sea water and shellfish. 4thEdition. pp. 61-66. APHA. New York, NY, USA.
 
  2. 國家食品藥品監(jiān)督管理總局。 2016。食品安全國家標準貝類中神經(jīng)性貝類毒素的 測 定。中華人民共和國國家標準。GB5009.261。
 
  附表一、神經(jīng)性貝類毒素之致死時間-小鼠單位換算表
            無標題1
 
  附表二、小鼠體重-小鼠單位之校正表
             無標題2
 
  本文由食品伙伴網(wǎng)食品資訊中心編輯,供網(wǎng)友參考,歡迎轉載,轉載請注明出處!有任何疑問,請聯(lián)系news@foodmate.net。
日期:2019-05-06
 
 地區(qū): 臺灣 中國
 行業(yè): 食品檢測
 標簽: 貝類 食品 生物毒素 毒素
 科普: 貝類 食品 生物毒素 毒素
 
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